ОБНИзвестия Российской академии наук. Серия биологическая Biology Bulletin

  • ISSN (Print) 1026-3470
  • ISSN (Online) 3034-5367

ОБ УСТОЙЧИВОСТИ ЗЕЛЕНОЙ ВОДОРОСЛИ ULVA LACTUCA L. И АССОЦИИРОВАННЫХ С НЕЙ МИКРООРГАНИЗМОВ К ВОЗДЕЙСТВИЮ ДИЗЕЛЬНОГО ТОПЛИВА В УСЛОВИЯХ ЭКСПЕРИМЕНТА

Код статьи
S30345367S1026347025050099-1
DOI
10.7868/S3034536725050099
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том / Номер выпуска 5
Страницы
580-593
Аннотация
Экспериментально показана способность Ulva lactuca Баренцева моря выживать при содержании в воде водорастворимых фракций дизельного топлива до 1 мг/л. При их содержании в среде более 4.9 мг/л у макрофитов отмечалось нарушение структуры клеток, снижение интенсивности фотосинтеза (в 2 – 16 раз относительно контроля), содержания фотосинтетических пигментов (более чем в 2 раза от контроля), увеличение содержания перекиси водорода и активности супероксиддисмутазы. Значительно изменялись количественные характеристики эпифитного бактериального сообщества. Высокое содержание нефтепродуктов в среде ограничивает распространение водорослей U. lactuca, однако при незначительном загрязнении они могут активно участвовать в процессах биоремедиации.
Ключевые слова
нефтяное загрязнение макрофиты интенсивность фотосинтеза антиоксидантная система бактериальное сообщество эпифитные бактерии
Дата публикации
23.01.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
74

Библиография

  1. 1. Воскобойников Г. М., Макаров М. В., Рыжик И. В., Малавенда С. В. Влияние абиотических факторов на структуру фитоценозов, морфологические и физиологические особенности водорослей-макрофитов Баренцева моря // Динамика морских экосистем и современные проблемы сохранения биологического потенциала морей России. Владивосток. Дальнаука, 2007. С. 357–386.
  2. 2. Воскобойников Г. М., Рыжик И. В., Салахов Д. О., Метелькова Л. О., Жаковская З. А., Лопушанская Е. М. Поглощение и преобразование дизельного топлива водорослью Palmaria palmata (Linnaeus) F. Weber et D. Mohr, 1805 (Rhodophyta) и ее возможная роль в биоремедиации морской воды // Биол. моря. 2020. Т. 46. № 2. С. 135–141.
  3. 3. Ильинский В. В. Гетеротрофный бактериопланктон // Практическая гидробиология: Учеб. для ун-тов. Под ред. В.Д. Федорова и В.И. Капкова. М.: ПИМ, 2006. 367 с.
  4. 4. Королюк М. А., Иванова Л., Майорова И., Токарев В. Метод определения активности каталазы // Лаб. дело. 1988. № 1. С. 16–19.
  5. 5. Ли Б. Д. Разделение, идентификация и количественное определение фотосинтетических пигментов макробентосных водорослей // Экологические аспекты фотосинтеза морских растений. Владивосток: ДВНЦ АН СССР. 1978. С. 38–54.
  6. 6. Очеретяна С. О., Клочкова Н. Г., Клочкова Т. А. Сезонный состав “зеленых приливов” в Авачинской губе и влияние антропогенного загрязнения на физиологию и рост некоторых зеленых водорослей // Вестн. КамчатГТУ. 2015. № 33. С. 30–36.
  7. 7. Патин С. А. Экологические проблемы освоения нефтегазовых ресурсов морского шельфа. М.: ВНИРО. 1997. 350 с.
  8. 8. Патин С. А. Нефтяные разливы и их воздействие на морскую среду и биоресурсы. М.: Изд-во ВНИРО. 2008. 508 с.
  9. 9. Марковская Е. Ф., Малавенда С. В., Рыжик И. В., Сергиенко Л. А., Сонина А. В., Стародубцева А. А., Воскобойников Г. М. Растения и лишайники Мурманского побережья Баренцева моря: полевой атлас. Петрозаводск: Изд-во ПетрГУ. 2016. 191 с.
  10. 10. Руководство по методам биологического анализа морской воды и донных отложений // Под ред. Цыбань А. В. Л.: Гидрометеоиздат, 1980. 191 с.
  11. 11. Уикли Б. Электронная микроскопия для начинающих. М.: Мир. 1975. 324 с.
  12. 12. Aaronson, A. A. Experimental Microbial Ecology. New York and London: Academic Press. 1970. 236 р.
  13. 13. Bellincampi D., Dipperro N., Salvi, G., Cervcone F., De Lorenzo G. Extracellular H2O2 induced by oligogalacturonides is not involved in the inhibition of the Auxin-Regulated rolB gene expression in tobacco leaf explants. Plant Physiol. 2000. № 122. 1379–1385. https://doi.org/10.1104/pp.122.4.1379
  14. 14. Brown K. E. King C. K., Kotzakoulakis K., George S. C., Harrison P. L. Assessing fuel spill risks in polar waters: Temporal dynamics and behaviour of hydrocarbons from Antarctic diesel, marine gas oil and residual fuel oil // Mar. Pollut. Bull. 2016. V. 110. №. 1. P. 343–353.https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2016.06.042
  15. 15. Dominguez H., Loret E. P. Ulva lactuca, a source of troubles and potential riches // Mar. Drugs. 2019. V. 17. №. 6. 357 P.https://doi.org/10.3390/md17060357
  16. 16. Donlan R. M. Biofilms: microbial life on surfaces // Emerg. Infect. Dis. 2002. Т. 8. №. 9. С. 881.
  17. 17. El Maghraby D., Hassan I. Photosynthetic and biochemical response of Ulva lactuca to marine pollution by polyaromatic hydrocarbons (PAHs) collected from different regions in Alexandria city, Egypt // Egypt. J. Bot. 2021. V. 61. № 2. P. 467–478. https://doi.org/10.21608/ejbo.2021.37571.1531
  18. 18. French-McCay D. P. Development and application of an oil toxicity and exposure model, OilToxEx // Environ. Toxicol. Chem. 2002. V. 21. № 10. P. 2080–2094. https://doi.org/10.1002/etc.5620211011
  19. 19. Giannopolitis C. N., Ries S. K. Superoxide dismutase I. Occurrence in higher plants // Plant Physiol. 1977. № 59. 309–314.https://doi.org/10.1104/pp.59.2.309
  20. 20. Goecke F., Labes A., Wiese J., Imhoffe J. F. Phylogenetic analysis and antibiotic activity of bacteria isolated from the surface of two cooccurring macroalgae from the Baltic Sea // Eur. J. Phycol. 2013, V. 48, №1. P. 47–60.https://doi.org/10.1080/09670262.2013.767944
  21. 21. Hokstad J. N., Faksness L.-G., Daling P. S., Buffagni M. Chemical and toxicological characterisation of water accommodated fractions relevant for oil spill situations // WIT Transactions on Ecology and the Environment. 1970. V. 27. https://doi.org/10.2495/OIL980131
  22. 22. Kusk K. O. Effects of crude oil and aromatic hydrocarbons on the photosinthesis of three species of Acrosiphonia grown in the laboratory // Bot. Mar. 1980. V. 23. P. 587–593. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1978.tb01558.x
  23. 23. Liu Y. X, Liu Y., Lou Y. D., Li N. Toxic effect of oil spill on the growth of Ulva pertusa by stable isotope analysis // IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. IOP Publishing, 2019. V. 344. № 1. P. 012062. https://doi.org/10.1088/1755-1315/344/1/012062
  24. 24. Malavenda S., Makarov M., Ryzhik I., Mityaev M., Malavenda S. Occurrence of Ulva lactuca L. 1753 (Ulvaceae, Chlorophyta) at the Murman Сoast of the Barents Sea // Pol. Res. 2018. V. 37. № 1. P. 1503912. https://doi.org/10.1080/17518369.2018.1503912
  25. 25. Martin M., Portetelle D., Michel G., Vandenbol M. Microorganisms living on macroalgae: diversity, interactions, and biotechnological applications // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2014. V. 98. P. 2917–2935. https://doi.org/10.1007/s00253-014-5557-2
  26. 26. Matsui T., Yamamoto T., Shinzato N., Mitsuta T., Nakano K., Namihira, T. Degradation of oil tank sludge using long-chain alkane-degrading bacteria // Ann. Microbiol. 2014. V. 64. P. 391–395. https://doi.org/10.1007/s13213-013-0643-8
  27. 27. McArthur D. M., Moss B. L. The ultrastructure of cell walls in Enteromorpha intestinalis (L.) Link // Br. Phycol. J. 1977. V. 12. № 4. P. 359–368. https://doi.org/10.1080/00071617700650381
  28. 28. Moss B. L. The control of epiphytes by Halidrys siliquosa (L.) Lyngb. (Phaeophyta, Cystoseiraceae) // Phycologia. 1982. V. 21. №. 2. P. 185–188. https://doi.org/10.2216/i0031-8884-21-2-185.1
  29. 29. Pasmore M., Costerton J. W. Biofilms, bacterial signaling, and their ties to marine biology // J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 2003. V. 30. P. 407–413. https://doi.org/10.1007/s10295-003-0069-6
  30. 30. Pilatti F. K. Ramlov F., Schmidt E. C., Kreusch M., Pereira D. T., Costa C., de Oliveira E. R., Bauer C. M., Rocha M., Z. L. Bouzon, Maraschin, M. In vitro exposure of Ulva lactuca Linnaeus (Chlorophyta) to gasoline–Biochemical and morphological alterations // Chemosphere. 2016. V. 156. P. 428–437. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2016.04.126
  31. 31. Porter K. G., Feig Y. S. The use DAPI for identifying and counting of aquatic microflora // Limnol. Oceanogr. 1980. V. 25 № 5 P. 943–948. https://doi.org/10.4319/lo.1980.25.5.0943
  32. 32. Ryzhik I., Pugovkin D., Makarov M., Roleda M. Y., Basova L., Voskoboynikov G. Tolerance of Fucus vesiculosus exposed to diesel water-accommodated fraction (WAF) and degradation of hydrocarbons by the associated bacteria // Environ. Pollut. 2019. V. 254. P. 113072. https://doi.org/10.1016/j.envpol.2019.113072
  33. 33. Ryzhik I. V., Pugovkin D. V., Salakhov D. O., Klindukh M. P., Voskoboynikov G. M. Physiological changes and rate of resistance of Acrosiphonia arcta (Dillwyn) Gain upon exposure to diesel fuel // Heliyon. 2022. V. 8. № 8. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2022.e10177
  34. 34. Ryzhik I., Salakhov D., Makarov M., Menshakova M. Analysis of physiological and biochemical parameters of Acrosiphonia arcta (Dillwyn) Gain cells at the early stage of stress reaction formation under the effect of diesel fuel emulsion // Mar. Biol. J. 2024. V. 9. № 1. P. 86–97. https://doi.org/10.21072/mbj.2024.09.1.07
  35. 35. Salakhov D., Pugovkin D., Ryzhik I., Voskoboinikov G. The influence of diesel fuel on morpho-functional state of Ulvaria obscura (Chlorophyta) // IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. IOP Publishing, 2020. V. 539. № 1. P. 012202. https://doi.org/10.1088/1755-1315/539/1/012202
  36. 36. Salakhov D., Pugovkin D., Ryzhik I., Voskoboinikov G. The changes in the morpho-functional state of the green alga Ulva intestinalis L. in the Barents Sea under the influence of diesel fuel // IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. IOP Publishing, 2021. V. 937. № 2. P. 022059. https://doi.org/10.1088/1755-1315/937/2/022059
  37. 37. Sand-Jensen K., Borum J. Photosynthetic responses of Ulva lactuca at very low light // Mar. Ecol. Prog. Ser. Oldendorf. 1988. V. 50. №. 1. P. 195–201.
  38. 38. Seely G. R., Duncan M. J., Vidaver W. E. Preparative and analytical extraction of pigments from brown algae with dimethyl sulfoxide // Mar. Biol. 1972. V. 12. P. 184–188. https://doi.org/10.1007/BF00350754
  39. 39. Singer, M. M., Aurand, D., Bragin, G. E., Clark, J. R., Coelho, G. M., Sowby, M. L., Tjeerdema R. S. Standardization of the preparation and quantitation of water-accommodated fractions of petroleum for toxicity testing // Mar. Pollut. Bull. V. 40. № 11. P. 1007–1016.https://doi.org/10.1016/S0025-326X (00)00045-X
  40. 40. Walker J. D., Colwell R. R. Measuring the potential activity of hydrocarbon-degrading bacteria // Appl. Environ. Microbiol. 1976. V. 31. P. 189–197.
  41. 41. Xia J., Li Y., Zou D. Effects of salinity stress on PSII in Ulva lactuca as probed by chlorophyll fluorescence measurements // Aquatic Botany. 2004. V. 80. № 2. P. 129–137. https://doi.org/10.1016/j.aquabot.2004.07.006
  42. 42. Zambrano J., Carballeira A. Effects of hydrocarbons on the physiology and growth of Ulva sp. (Chlorophyta) // Bol. Inst. Esp. Oceanogr. – 1999. V. 15. № 1. P. 373–381.
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека