ОБНИзвестия Российской академии наук. Серия биологическая Biology Bulletin

  • ISSN (Print) 1026-3470
  • ISSN (Online) 3034-5367

Физическая травма изменяет спектр летучих органических соединений мочи мышей

Код статьи
S1026347025020075-1
DOI
10.31857/S1026347025020075
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том / Номер выпуска 2
Страницы
194-202
Аннотация
Летучий метаболом, отражающий связанные с болезнью специфические и неспецифические метаболические изменения, формирует “обонятельный образ” болезни. Исследованы изменения летучего метаболома мочи мышей в результате легкой физической травмы – подкожной инъекции. Показано, что животные-детекторы, собаки и мыши, различают летучие метаболиты мочи модельных мышей, подвергшихся физической травме (введение физраствора), как от интактных мышей (контроль), так и от мышей, которым вводили здоровую и пораженную опухолью ткань печени. Две последовательные травмы увеличивали сходство запахов между здоровыми и пораженными опухолью мышами. Было сделано заключение, что физическая травма вносит значительный вклад в “обонятельный образ” болезни.
Ключевые слова
обоняние запах болезни физическая травма собаки
Дата публикации
04.11.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
49

Библиография

  1. 1. Родионова Е. И., Кочевалина М. Ю., Котенкова Е. В., Морозова О. В., Когунь Г. А., Батаева Е. Л., Амбарян А. В. Распознавание животными-макросматиками летучих органических веществ, связанных с развитием гепатокарциномы: подходы к поиску маркеров онкологических заболеваний // Изв. РАН. Сер. биол. 2015. № 3. С. 293–301.
  2. 2. Кочевалина М. Ю., Трунов В. Г. Принципы организации базы данных для поведенческих экспериментов с животными-макросматиками // Успехи современной науки. 2016. Т. 3. № 4. С. 130–133.
  3. 3. Кочевалина М. Ю., Трунов В. Г., Морозова О. В., Когунь Г. А., Родионова Е. И. Изменение запаха мочи мышей в динамике формирования перевитой опухоли гепатокарциномы Н33 // Изв. РАН. Сер. биол. 2020. № 5. С. 517–525.
  4. 4. Alves G. J., Vismari L., Lazzarini R., Merusse J. L., Palermo-Neto J. Odor cues from tumor-bearing mice induces neuroimmune changes // Behav. Brain Res. 2010. V. 214. P. 357–367. https://doi.org/10.1016/j.bbr.2010.06.003
  5. 5. Arakawa H., Arakawa K., Deak T. Sickness-related odor communication signals as determinants of social behavior in rat: a role for inflammatory processes // Horm. Behav. 2010. V. 57. № 3. P. 330‒341. https://doi.org/10.1016/j.yhbeh.2010.01.002
  6. 6. Arbuckle E. P., Smith G. D., Gomez M. C., Lugo J. N. Testing for odor discrimination and habituation in mice // JoVE. 2015. V. 99. P. e52615. DOI:10.3791/52615
  7. 7. Bijland L. R., Bomers M. K., Smulders Y. M. Smelling the diagnosis: A review on the use of scent in diagnosing disease // Neth. J. Med. 2013. V. 71. P. 300–307.
  8. 8. Concha A. Detection of Human Diseases for Medical Diagnostics // Olfactory Research in Dogs / Ed. Lazarowski L. Cham: Springer International Publishing. 2023. P. 291–331. https://doi.org/10.1007/978-3-031-39370-9_12
  9. 9. Fitzgerald S., Holland L., Ahmed W., Piechulla B., Fowler S. J., Morrin A. Volatilomes of human infection // Anal. Bioanal. Chem.2024. V. 416. P. 37–53. https://doi.org/10.1007/s00216-023-04986-z
  10. 10. Gervasi S. S., Opiekun M., Martin T., Beauchamp G. K., Kimball B. A. Sharing an environment with sick conspecifics alters odors of healthy animals // Sci. Rep. 2018. V. 8. P. 14255. https://doi.org/10.1038/s41598-018-32619-4
  11. 11. Gordon A. R., Kimball B. A., Sorjonen K., Karshikoff B., Axelsson J., Lekander M., Lundström J. N., Olsson M. J. Detection of inflammation via volatile cues in human urine // Chem. Senses. 2018. V. 43. P. 711–719. https://doi.org/10.1093/chemse/bjy059
  12. 12. Gouzerh F., Bessière J. M., Ujvari B., Thomas F., Dujon A. M., Dormont L. Odors and cancer: Current status and future directions // Biochim. Biophys. Acta (BBA). Reviews on Cancer. 2022. V. 1877. P. 188644. https://doi.org/10.1016/j.bbcan.2021.188644
  13. 13. Jezierski T., Walczak M., Górecka A. Information-seeking behaviour of sniffer dogs during match-to-sample training in the scent lineup // Pol. Psychol. Bull. 2008. P ??? https://doi.org/10.2478/v10059-008-0010-y
  14. 14. Juge A. E., Foster M. F., Daigle C. L. Canine olfaction as a disease detection technology: A systematic review // Appl. Anim. Behav. Sci. 2022. V. 253. P. 105664. https://doi.org/10.1016/j.applanim.2022.105664
  15. 15. Kavaliers M., Colwell D. D. Exposure to the Scent of Male Mice Infected With the Protozoan Parasite, Eimeria vermiformis, Induces Opioid-and Nonopioid- Mediated Analgesia in Female Mice // Physiol. Behav. 1992. V. 52. P. 373–377. https://doi.org/10.1016/0031-9384 (92)90286-B
  16. 16. Kavaliers M., Colwell D. D. Odours of parasitized males induce aversive responses in female mice // Anim. Behav. 1995. V. 50. P. 1161–1169. https://doi.org/10.1016/0003-3472 (95)80032-8
  17. 17. Kimball B. A., Cohen A. S., Gordon A. R., Opiekun M., Martin T., Elkind J., Lundström J. N., Beauchamp G. K. Brain injury alters volatile metabolome // Chem. Senses. 2016a. V. 41. № 5. P. 407–414. https://doi.org/10.1093/chemse/bjw014
  18. 18. Kimball B. A., Opiekun M., Yamazaki K., Beauchamp G. K. Immunization alters body odor // Physiol. Behav. 2014. V. 128. P. 80–85. https://doi.org/10.1016/j.physbeh.2014.01.022
  19. 19. Kimball B. A., Wilson D. A., Wesson D. W. Alterations of the volatile metabolome in mouse models of Alzheimer’s disease // Sci. Rep. 2016b. V. 14. № 6, P. 19495. https://doi.org/10.1038/srep19495
  20. 20. Kimball B. A., Yamazaki K., Kohler D, Bowen R. A., Muth J. P., Opiekun M., Beauchamp G. K. Avian influenza infection alters fecal odor in mallards // PLoS ONE. 2013. V. 8. № 10. P. e75411. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0075411
  21. 21. Kiyokawa Y., Kikusui T., Takeuchi Y., Mori Y. Removal of the vomeronasal organ blocks the stress-induced hyperthermia response to alarm pheromone in male rats // Chem. Senses. 2007. V. 32. № 1. Р. 57–64. https://doi.org/10.1093/chemse/bjl036
  22. 22. Kochevalina M. Y., Bukharina A. B., Trunov V. G., Pento A. V., Morozova O. V., Kogun G. A., Simanovsky Y. O., Nikiforov S. M., Rodionova E. I. Changes in the urine volatile metabolome throughout growth of transplanted hepatocarcinoma // Sci. Rep. 2022. V.12. P. 7774. https://doi.org/10.1038/s41598-022-11818-0
  23. 23. Kwak J., Willse A., Matsumura K., Curran Opiekun M., Yi W., Preti G., Yamazaki K., Beauchamp G. K. Genetically-based olfactory signatures persist despite dietary variation // PLoS One. 2008. V. 3. P. e359.1 https://doi.org/10.1371/journal.pone.0003591
  24. 24. Kwak J., Willse A., Preti G., Yamazaki K., Beauchamp G. K. In search of the chemical basis for MHC odourtypes // Proc. Roy. Soc. London, Ser. B, Biol. Sci. 2010. V. 277. P. 2417–2425. https://doi.org/10.1098/rspb.2010.0162
  25. 25. Lazarevich N. L., Cheremnova O. A., Varga E. V., Ovchinnikov D. A., Kudrjavtseva E. I., Morozova O. V., Fleishman D. I., Engelhardt N. V., Duncan S. A. Progression of HCC in mice is associated with a downregulation in the expression of hepatocyte nuclear factors // Hepatology. 2004.V. 39. P. 1038–1047. doi 10.1002/hep.20155
  26. 26. Lazarowski L., Davila A., Krichbaum S., Cox E., Smith J. G., Waggoner L. P., Katz J. S. Matching-to-sample abstract-concept learning by dogs (Canis familiaris) // J. Exp. Psychol. Anim. Learn. Cogn. 2021. V. 47. P. 393–400. https://doi.org/10.1037/xan0000281
  27. 27. Marchal S., Bregeras O., Puaux D., Gervais R., Ferry B. Rigorous training of dogs leads to high accuracy in human scent matching-to-sample performance // PLoS One. 2016. V. 11. P. e0146963. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0146963
  28. 28. Olsson M. J., Lundström J. N., Kimball B. A., Gordon A. R., Karshikoff B., Hosseini N., Sorjonen K., Olgart Höglund C., Solares C., Soop A., Axelsson J. The scent of disease: human body odor contains an early chemosensory cue of sickness // Psychol. Sci. 2014. V. 25. P. 817–823. https://doi.org/10.1177/0956797613515681
  29. 29. Penn D. J., Schneider G., White K., Slev P., Potts W. Influenza infection neutralizes the attractiveness of male odour to female mice (Mus musculus). Ethology. 1998. V. 104. P. 685–694. https://doi.org/10.1111/j.1439-0310.1998.tb00102.x
  30. 30. Schellinck H. M., Rooney E., Brown R. E. Odors of individuality of germfree mice are not discriminated by rats in a habituation-dishabituation procedure // Physiol. Behav. 1995. V. 57. Р. 1005–1008. https://doi.org/10.1016/0031-9384 (94)00353-7
  31. 31. Sun X, Li L, He W, Wang DR, Huang ZL, Wang YQ. Adenosine A2A receptor neurons in the olfactory bulb mediate odor-guided behaviors in mice // Brain Research. 2021. V? P? Oct 1;1768:147590. https://doi.org/10.1016/j.brainres.2021.147590
  32. 32. Tarland E., Brosda J. Male rats treated with subchronic PCP show intact olfaction and enhanced interest for a social odour in the olfactory habituation/dishabituation test // Behav. Brain Res. 2018. V. 345. P. 13–20. https://doi.org/10.1016/j.bbr.2018.02.023
  33. 33. Yamazaki K., Boyse E. A., Bard J., Curran M., Kim D., Ross S. R., Beauchamp G. K. Presence of mouse mammary tumor virus specifically alters the body odor of mice // Proc. Natl. Acad. Sci. 2002. V. 99. P. 5612–5615. https://doi.org/10.1073/pnas.082093099
  34. 34. Yang M., Crawley J. N. Simple behavioral assessment of mouse olfaction // Curr. Protoc. Neurosci. 2009. V. 48. P. 8–24. https://doi.org/10.1002/0471142301.ns0824s48
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека